鱼类低氧实验-应用案例

《 Arterioscler Thromb Vasc Biol》丨 英国布里斯托尔大学Rebecca J Richardson团队揭示低氧条件下斑马鱼幼体和成体内源性心血管细胞外囊泡的体内表征


2021年9月,英国布里斯托尔大学生理学、药理学和神经科学学院Rebecca J Richardson团队发表题为“In Vivo Characterization of Endogenous Cardiovascular Extracellular Vesicles in Larval and Adult Zebrafish”的研究论文。该研究聚焦细胞外囊泡(EVs)在心血管生理与病理中的在体行为,针对内源性 EV 在体研究的技术瓶颈,利用斑马鱼模型的遗传和成像优势,构建了基于膜锚定荧光报告系统的转基因斑马鱼模型。研究发现,该模型可成功实现对斑马鱼幼体及成体中多种细胞类型(如内皮细胞、心肌细胞)所产生 EV 的特异性荧光标记、高时空分辨率活体追踪及后续的流式与电镜分析;进一步验证表明,该模型能清晰揭示成年心脏内不同细胞间的 EV 交换,并可动态监测缺血损伤对 EV 产生的影响。该研究建立了无偏倚追踪内源性 EV 细胞起源的斑马鱼在体研究体系,突破了传统 EV 研究依赖体外分离和蛋白标记的局限,为深入解析 EV 在心血管疾病发生发展中的动态功能及分子机制提供了创新性的工具和重要技术支撑。

 

在该研究中,低氧是核心实验变量与关键生理应激模型构建工具,通过将 3 天大的斑马鱼幼虫暴露于精准调控的 5%O₂低氧环境中持续 18 小时,并以常氧条件作为平行对照,构建了标准化的低氧应激体系。这一特定的低氧暴露参数(5% O₂ ,18 小时)为直接评估低氧对体内细胞外囊泡(EVs)动态变化的影响提供了可控且可重复的实验平台,其稳定维持的低氧浓度是准确量化外周循环中内皮细胞来源 EV(EC-EV)数量变化、验证低氧诱导 EC-EV 释放增加的核心前提。同时,5%O₂低氧条件与常氧条件形成的鲜明对比,有效排除了非特异性环境因素的干扰,确保了实验结果的可靠性与特异性,为深入揭示低氧应激下 EV 介导的细胞间通讯机制、解析非侵入性组织挑战后的动态 EV 反应提供了不可或缺的实验基础与关键支撑。

作为低氧/厌氧设备生产商,迈沃德动物低氧设备覆盖了动物低氧实验全流程的完整设备体系,专注为客户提供定制化整体解决方案。在鱼类低氧胁迫研究中,可根据实验需求灵活整合鱼缸,实现定制化低氧环境的准确构建与稳定维持。该设备能够适配不同规格的实验鱼缸,精确模拟从常氧到梯度低氧的全流程环境变化,可匹配本研究中急性低氧诱导的实验设计需求;同时,其专业的密封与气体循环系统确保低氧环境的稳定性与均一性,为系统观察鱼类在不同低氧程度下的生理响应、准确量化低氧耐受能力提供了可靠的实验平台。

 

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